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FluorPen FP110手持式葉綠素熒光儀
更新時間：2023-02-27
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FluorPen FP110手持式葉綠素熒光儀用于實驗室、溫室和野外快速測量植物葉綠素熒光參數，具有便攜性強、精確度高、性價比高等特點；雙鍵操作，具圖形顯示屏，內置鋰電和數據存儲，廣泛應用于研究植物的光合作用、脅迫監(jiān)測、除草劑檢測或突變體篩選，還可用于生態(tài)毒理的生物檢測，如通過不同植物對土壤或水質污染的葉綠素熒光響應，找出敏感植物作為生物傳感器用于生物檢測。
| 品牌 | 其他品牌 | 價格區(qū)間 | 1萬-5萬 |
|---|---|---|---|
| 產地類別 | 進口 | 應用領域 | 環(huán)保,食品,化工,生物產業(yè),農業(yè) |
FluorPen FP110手持式葉綠素熒光儀用于實驗室、溫室和野外快速測量植物葉綠素熒光參數，具有便攜性強、精確度高、性價比高等特點；雙鍵操作，具圖形顯示屏，內置鋰電和數據存儲，廣泛應用于研究植物的光合作用、脅迫監(jiān)測、除草劑檢測或突變體篩選，還可用于生態(tài)毒理的生物檢測，如通過不同植物對土壤或水質污染的葉綠素熒光響應，找出敏感植物作為生物傳感器用于生物檢測。 FluorPen FP110手持式葉綠素熒光儀配備多種葉夾型號，用于不同的樣品與研究。
應用領域
適用于光合作用研究和教學，植物及分子生物學研究，農業(yè)、林業(yè)，生物技術領域等。研究內容涉及光合活性、脅迫響應、農藥藥效測試、突變篩選等。
· 植物光合特性研究
· 光合突變體篩選與表型研究
· 生物和非生物脅迫的檢測
· 植物抗脅迫能力或者易感性研究
· 農業(yè)和林業(yè)育種、病害檢測、長勢與產量評估
· 除草劑檢測
· 教學
功能特點：
- 結構緊湊、便攜性強，LED光源、檢測器、控制單元集成于僅手機大小的儀器內，重量僅188g
- 功能強大，是葉綠素熒光技術的結晶產品，具備了大型熒光儀的所有功能，可以測量所有葉綠素熒光參數
- 內置了所有通用葉綠素熒光分析實驗程序，包括3套熒光淬滅分析程序、3套光響應曲線程序、OJIP快速熒光動力學曲線等
- 高時間分辨率，可達10萬次每秒，自動繪出OJIP曲線并給出26個OJIP–test參數
- FluorPen專業(yè)軟件功能強大，可下載、展示葉綠素熒光參數圖表，也可以通過軟件直接控制儀器進行測量
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- 具備無人值守自動監(jiān)測功能
- 內置藍牙與USB雙通訊模塊，GPS模塊，輸出帶時間戳和地理位置的葉綠素熒光參數圖表
- 配備多種葉夾型號：固定葉夾式（適于實驗室內暗適應或夜間快速測量）、分離葉夾式（適用于野外暗適應測量）、探頭式（透明光纖探頭，具備葉片固定裝置，用于非接觸性測量監(jiān)測或光適應條件下的葉綠素熒光監(jiān)測）、用戶定制式等
- 可選配野外自動監(jiān)測式熒光儀，防水防塵設計
測量程序與功能
· Ft：瞬時葉綠素熒光,暗適應完成后Ft＝F0
· QY：量子產額，表示光系統(tǒng)II 的效率，等于Fv/Fm(暗適應狀態(tài))或ΦPSII (光適應狀態(tài))。
· OJIP：快速熒光動力學曲線，用于研究植物暗適應后的快速熒光動態(tài)變化
· NPQ：熒光淬滅動力學曲線，用于研究植物從暗適應到光適應狀態(tài)的熒光淬滅變化過程。
· LC：光響應曲線，用于研究植物對不同光強的熒光淬滅反應。
· PAR：光合有效輻射，測量環(huán)境中植物生長可以利用的400-700nm實際光強（限PAR型號）。
技術參數
- 測量參數包括F0、Ft、Fm、Fm’、QY、QY_Ln、QY_Dn、NPQ、Qp、Rfd、PAR（限PAR型號）、Area、Mo、Sm、PI、ABS/RC等50多個葉綠素熒光參數，及3種給光程序的光響應曲線、3種熒光淬滅曲線、OJIP曲線等
- OJIP–test時間分辨率為10µs（每秒10萬次），給出OJIP曲線和26個參數，包括F0、Fj、Fi、Fm、Fv、Vj、Vi、Fm/F0、Fv/F0、Fv/Fm、Mo、Area、Fix Area、Sm、Ss、N、Phi_Po、Psi_o、Phi_Eo、Phi–Do、Phi_Pav、PI_Abs、ABS/RC、TRo/RC、ETo/RC、DIo/RC等
- 測量程序：Ft、QY、OJIP、NPQ1、NPQ2、NPQ3、LC1、LC2、LC3、PAR（限PAR型號）、Multi無人值守自動監(jiān)測
- 葉夾類型：FP110/S固定葉夾式、FP110/D分離葉夾式、FP110/P探頭式、FP110/X用戶定制式
- PAR傳感器（限PAR型號）：80º入射角余弦校正，讀數單位µmol(photons)/m².s，可顯示讀數，檢測范圍400-700 nm
- 測量光：每測量脈沖0.09µmol(photons)/m².s，10-100%可調
- 光化學光：10-1000µmol(photons)/m².s可調
- 飽和光：3000µmol(photons)/m².s，10-100%可調
- 光源：標準配置藍光470nm，可根據需求配備不同波長的LED光源
- 檢測器：PIN光電二極管，667–750nm濾波器
- 尺寸大小：超便攜，手機大小，134×65×33mm，重量僅188g
- 存貯：容量16Mb，可存儲149000數據點
- 顯示與操作：圖形化顯示，雙鍵操作，待機8分鐘自動關閉
- 供電：可充電鋰電池，USB充電，連續(xù)工作48小時，低電報警
- 工作條件：0–55℃，0–95%相對濕度（無凝結水）
- 存貯條件：-10–60℃，0–95％相對濕度（無凝結水）
- 通訊方式：藍牙+USB雙通訊模式
- GPS模塊：內置
- 軟件：FluorPen1.1軟件，用于數據下載、分析和圖表顯示，輸出Excel數據文件及熒光動力學曲線圖，適用于Windows 7及更高操作系統(tǒng)
操作軟件與實驗結果
產地：捷克
應用案例：
2017年4月，美國國家航空航天局（NASA）新一代*進植物培養(yǎng)器（Advanced Plant Habitat，APH）搭載聯盟號MS-04貨運飛船抵達空間站。宇航員使用FluorPen手持儀葉綠素熒光儀在其中開展植物生理學及太空食物種植（growth of fresh food in space）的研究。
參考文獻
- F Dang, et al. 2019. Discerning the Sources of Silver Nanoparticle in a Terrestrial Food Chain by Stable Isotope Tracer Technique. Environmental Science & Technology 53(7): 3802-3810
- N Moghimi, et al. 2019. New candidate loci and marker genes on chromosome 7 for improved chilling tolerance in sorghum. Journal of Experimental Botany 70(12): 3357–3371
- M Rafique, et al. 2019. Potential impact of biochar types and microbial inoculants on growth of onion plant in differently textured and phosphorus limited soils. Journal of Environmental Management 247: 672-680
- P Soudek, et al. 2019. Thorium as an environment stressor for growth of Nicotiana glutinosa plants. Environmental and Experimental Botany 164: 84-100
- JA Pérez-Romero, et al. 2019. Investigating the physiological mechanisms underlying Salicornia ramosissima response to atmospheric CO2 enrichment under coexistence of prolonged soil flooding and saline excess. Plant Physiology and Biochemistry 135: 149-159
- D Shao, et al. 2019. Physiological and biochemical responses of the salt-marsh plant Spartina alterniflora to long-term wave exposure. Annals of Botany, DOI: 10.1093/aob/mcz067
- C Cirillo, et al. 2019. Biochemical, Physiological and Anatomical Mechanisms of Adaptation of Callistemon citrinus and Viburnum lucidum to NaCl and CaCl2 Salinization. Front. Plant Sci. 10:742
附：OJIP參數及計算公式
Bckg = background
Fo: = F50µs; fluorescence intensity at 50 µs
Fj: = fluorescence intensity at j-step (at 2 ms)
Fi: = fluorescence intensity at i-step (at 60 ms)
Fm: = maximal fluorescence intensity
Fv: = Fm - Fo (maximal variable fluorescence)
Vj = (Fj - Fo) / (Fm - Fo)
Fm / Fo = Fm / Fo
Fv / Fo = Fv / Fo
Fv / Fm = Fv / Fm
Mo = TRo / RC - ETo / RC
Area = area between fluorescence curve and Fm
Sm = area / Fm - Fo (multiple turn-over)
Ss = the smallest Sm turn-over (single turn-over)
N = Sm . Mo . (I / Vj) turn-over number QA
Phi_Po = (I - Fo) / Fm (or Fv / Fm)
Phi_o = I - Vj
Phi_Eo = (I - Fo / Fm) . Phi_o
Phi_Do = 1 - Phi_Po - (Fo / Fm)
Phi_Pav = Phi_Po - (Sm / tFM); tFM = time to reach Fm (in ms)
ABS / RC = Mo . (I / Vj) . (I / Phi_Po)
TRo / RC = Mo . (I / Vj)
ETo / RC = Mo . (I / Vj) . Phi_o)
DIo / RC = (ABS / RC) - (TRo / RC)